Description : MISSION PRINCIPALE : Le groupe de Neuroimmunologie recherche actuellement un·e technicien·ne de laboratoire, motivé·e et proactif·ve, pour rejoindre un projet de recherche translationnelle dirigé par le Dr Lennart Mars, au sein du Pôle Recherche (CHU de Lille). Ce projet est dédié à l’étude d’une nouvelle sous-population de cellules B inflammatoires impliquées dans la sclérose en plaques (SEP). En s’appuyant sur une cohorte de patients non traités au stade précoce de la maladie, des coupes de cerveau post-mortem et des modèles murins dédiés, le projet vise à caractériser la localisation, le phénotype et la prédominance de ces cellules B inflammatoires dans différents compartiments cérébraux. Il s’intéresse également à leurs interactions avec les cellules T et la microglie (cellules myéloïdes résidentes du cerveau), aussi bien chez les patients que dans des modèles murins de transfert adoptif de lymphocytes B. Les analyses seront réalisées à l’aide de techniques avancées telles que la cytométrie de flux spectrale, la transcriptomique traditionnelle et spatiale, ainsi que l’imagerie de fluorescence spectrale. Le projet est mené en collaboration avec la clinique SEP du CHU de Lille et l’équipe du Dr Jan Bauer au Centre de recherche sur le cerveau de Vienne (Autriche). Le·la technicien·ne jouera un rôle central de soutien technique au sein de l’équipe. Il·elle maîtrisera les techniques d’expérimentation animale, de culture cellulaire, de cytométrie de flux et de biologie moléculaire. Il·elle sera notamment chargé·e du génotypage des colonies murines, de la gestion des stocks, et de la production rigoureuse de résultats expérimentaux. ACTIVITÉS PRINCIPALES : · Générer et documenter les résultats expérimentaux produits dans le cadre des projets de recherche. · Apporter un soutien technique central à l’équipe, en participant activement aux travaux de laboratoire. · Appliquer des protocoles expérimentaux, tout en transmettant les savoir-faire techniques associés. · Contribuer à la gestion des stocks, le suivi des commandes et l’achat de petit matériel ou appareillage de laboratoire. · Former les étudiants de Master 1 et 2, en interne et en externe, aux méthodes et techniques mises en œuvre au laboratoire. · Contribuer à la mise en forme des résultats scientifiques, en appui à la rédaction d’appels à projets, de publications et de communications orales ou affichées. SPÉCIFICITÉ(S) ET ENVIRONNEMENT DU POSTE : · Travail expérimental en milieu confiné (Animalerie A2). · Travail en horaires décalés. Profil recherché : CONNAISSANCES : · Connaissances pratiques en biologie et/ou immunologie. · Maîtrise des techniques générales de biologie. Maitrise des méthodes spécifiques à l’immunologie expérimentale serait un avantage. · Application rigoureuse des bonnes pratiques de laboratoire. · Capacité à garantir la qualité des résultats obtenus. · Aptitude à mettre au point et exécuter un protocole expérimental. · Expérimentation animale : * Biologie cellulaire (culture cellulaire, cytométrie en flux, microscopie), * Biologie moléculaire, incluant la transcriptomique en vrac et unicellulaire, et la RT-PCR quantitative. · Connaissance des règles d’hygiène et de sécurité relatives à la manipulation des rongeurs. · Connaissance des normes de sécurité applicables aux laboratoires conventionnels et de niveau L2. · Aisance avec les outils informatiques : pour le traitement des données (excel, Prism), le pilotage des équipements, et la réalisation de supports de présentation (Word, PowerPoint). · Capacité à assurer une veille bibliographique sur les techniques et technologies utilisées au laboratoire. · Maîtrise de l’anglais scientifique serait un avantage. · Tenue structurée et à jour du cahier de laboratoire, au format électronique ou papier. SAVOIR-FAIRE : · Réaliser des expérimentations animales, incluant le suivi clinique de modèles murins. · Maîtriser les techniques d’injection intraveineuse, intrapéritonéale et sous-cutanée chez la souris. · Effectuer des prélèvements d’organes : cerveau, moelle épinière, moelle osseuse, organes lymphoïdes secondaires. · Analyser les réponses immunitaires in vivo et ex vivo : culture de cellules primaires et de lignées, tests de présentation antigénique. · Utiliser la cytométrie de flux : immunomarquage (anticorps primaires, secondaires, intracellulaires), acquisition et tri cellulaire. · Mettre en œuvre des tests fonctionnels immunologiques : prolifération, Elispot, sécrétion de cytokines. · Pratiquer les techniques de biologie moléculaire de base : extraction d’ADN et d’ARN, PCR, PCR quantitative, Western blot. · Réaliser des préparations histologiques : coupes en paraffine et en congélation. · Exécuter des dosages en biochimie : purification d’anticorps, dosage ELISA. · Utiliser des techniques d’imagerie cellulaire, en particulier la microscopie confocale et l’immunofluorescence standard. · Tenir de manière rigoureuse ...